Parazytologia i inwazjologia 7100-PARAZ-3-SJ

Podczas wykładów z parazytologii i inwazjologii omawiane są główne grupy pasożytów (pierwotniaki, przywry, tasiemce, nicienie, stawonogi) z uwzględnieniem dróg zarażenia, objawów klinicznych, patogenezy i stosowanych środków farmakologicznych. Prezentowane są również zagadnienia dotyczące molekularnych podstaw oporności na leki przeciwpasożytnicze, a także analiza odpowiedzi organizmu żywiciela na pasożyty. Omawiane są także sposoby profilaktyki zarażeń pasożytami i programy zwalczania pasożytów zwierząt użytkowych. W przypadku zwierząt z biotopu człowieka przedstawiane są zoonotyczne zagrożenia związane z eukariotycznymi organizmami pasożytniczymi.

Student powinien nabyć wiedzę z zakresu parazytologii weterynaryjnej, w tym opanować biologię, morfologię, cykle rozwojowe, chorobotwórczość i zwalczanie pasożytów wewnętrznych i zewnętrznych wywołujących choroby pasożytnicze u zwierząt towarzyszących, hodowlanych, dzikich oraz laboratoryjnych. Zapoznanie studentów z metodami diagnostycznymi stosowanymi w parazytologii weterynaryjnej: metody mikroskopowe, w tym koproskopowe i larwoskopowe, hodowle pierwotniaków i nicieni, techniki biologii molekularnej oraz testy serologiczne. Student powinien umieć wybrać rodzaj materiału biologicznego do badań parazytologicznych i znać zasady jego transportu, zabezpieczenia oraz posiadać wiedzę o doborze metod diagnostycznych dla wybranego materiału. Nabycie umiejętności praktycznych w zakresie mikroskopowych technik diagnostyki parazytologicznej (techniki koproskopowe, larwoskopowe, hodowle pierwotniaków, test Knotta, rozmaz krwi, gruba kropla krwi). Nabycie wiedzy o preparatach przeciwpasożytniczych dopuszczonych do obrotu na krajowym rynku weterynaryjnym z wyszczególnieniem gatunków zwierząt ujętych w karcie charakterystyki produktu leczniczego i spektrum ich działania. Umiejętność wskazania przez studenta zoonoz pasożytniczych oraz posiadanie wiedzy o drogach ich szerzenia i zapobiegania.
Podczas zajęć laboratoryjnych studenci poznają sposoby badania materiału biologicznego w kierunku diagnostyki pasożytów, gadów, ptaków i ssaków, ze szczególnym uwzględnieniem zwierząt o dużym znaczeniu gospodarczym. Samodzielnie wykonują preparaty diagnostyczne z pobranego samodzielnie lub dostarczonego przez prowadzących materiału biologicznego i wykonują badania próbek dostępnymi metodami. W oparciu o poglądowy materiał - także dokumentację fotograficzną - rozpoznają objawy parazytoz u zwierząt oraz uczą się stawiania diagnozy. Poznają schematy odrobaczania zwierząt.

W cyklu 2024/25L:

Tematy wykładów prowadzonych przez prof. dr hab. E. Żbikowską (biolog)
1. Wstęp do parazytologii
2. Adaptacje zwierzęcopodobnych Protista do pasożytnictwa
3. Adaptacje Acoelomata i Pseudocelomata do pasożytnictwa
4. Adaptacje Arthropoda do pasożytnictwa i akaroentomologia weterynaryjna
5. Ichtiopatologia - pasożyty ryb słodkowodnych
6. Ichtiopatologia - pasożyty ryb morskich
7. Zoonozy pasożytnicze

Tematy wykładów prowadzonych przez prof. dr. hab. Zenona Sołtysiaka (lekarz weterynarii)
8. Choroby pasożytnicze koni I
9. Choroby pasożytnicze koni II
10. Choroby pasożytnicze bydła, owiec i kóz I
11. Choroby pasożytnicze bydła, owiec i kóz II
12. Choroby pasożytnicze mięsożernych (psów, kotów, lisów) I
13. Choroby pasożytnicze mięsożernych (psów, kotów, lisów) II
14. Choroby pasożytnicze trzody chlewnej I
15. Choroby pasożytnicze trzody chlewnej II

Tematy ćwiczeń:
Ćwiczenia 1: Szczegółowa diagnostyka mikroskopowa w parazytologii (Dr Anna Cichy)
1. badania mikroskopowe w parazytologii – badanie kału (rozmaz bezpośredni barwiony płynem Lugola i bez barwienia), sedymentacja, dekantacja, metoda Baermanna, hodowle kałowe w kierunku pierwotniaków i larw nicieni), osady moczu, rozmazy krwi, płyny z jam ciała (PMR, maź stawowa, torbiele).
2. metody pobierania i konserwacji (etanol, formalina, dwuchromian potasu, odczynnik SAF) materiału do badań mikroskopowych; pobieranie prób środowiskowych do badań parazytologicznych.
3. zajęcia praktyczne - samodzielna praca z mikroskopem i przygotowanie preparatów do oceny: rozmazy kału, rozmazy krwi, preparaty cytologiczne, zeskrobiny

Ćwiczenia 2: Bezkręgowce i ich rola w cyklu rozwojowym pasożytów (Dr Anna Cichy)
1. żywiciele: mięczaki: błotniarka stawowa (Lymnaea stagnalis): Diplostomum pseudospathaceum, Echinoparyphium aconiatum, E. recurvatum, Echinostoma revolutum, Hypoderaeum conoideum, Notocotylus attenuates, Opisthioglyphe ranae, Plagiorchis elegans, Sanguinicola inermis, Tylodelphys clavate, Trichobilharzia szidati, T. regenti; ślimaki słodkowodne z rodzaju Radix: Apatemon gracilis, Australapatemon burti, A. minor, Paryphostomum radiatum; błotniarka pospolita (Stagnicola palustris): Moliniella anceps; zatoczek rogowy (Planorbarius corneus): Bilharziella polonica, Cotylurus cornutus, Echinostoma spiniferum, Notocotylus ephemera, Tylodelphys excavata; zatoczek pospolity (Planorbis planorbis): Diplodiscus subclavatus, Alaria alata, Posthodiplostomum cuticula; ślimaki z rodzaju Helicella: Dicrocoelium dendriticum; żyworodka pospolita (Viviparus contectus) oraz żyworodka rzeczna (Viviparus viviparus): Amblosoma exile, Leucochloridiomorpha lutea, Neoacanthoparyphium echinatoides, Paracoenogonimus ovatus; zagrzebka pospolita (Bithynia tentaculata): Asymphylodora tincae, Notocotylus imbricatus, Sphaeridiotrema globulus; zagrzebka sklepiona (Bithynia leachi): Opistorchis felineus; błotniarka moczarowa (Galba truncata): Fasciola hepatica; racicznica zmienna (Dreissena polymorpha): Bucephalus polymorphus, Echinoparyphium recurvatum; szczeżuja pospolita (Anodonta anatina): Aspidogaster conchicola, Rhipidocotyle campanula, Unionicola spp., Phyllodistomum folium; skójki (Unio spp.): Aspidogaster conchicola, Rhipidocotyle campanula; szczeżuja chińska (Sinanodonta woodiana): Rhipidocotyle campanula, Unionicola spp.; małże z rodzaju Corbicula: Echinostomatidae (metacerkarie)
2. żywiciele: owady: mącznik młynarek (Tenebrio molior): Gregarina polymorpha, G. cuneata, G. steini, Hymenolepis diminuta, Rodentolepis (Hymenolepis) nana; drewnojad (Zophobas morio): Gregarina spp.; rodzaje Glossina, Tabanus, Stomoxys, Xenopsylla: Trypanosoma spp.; rodzaj Phlebotomus: Leishmania spp.; rodzaje Anopheles, Aedes, Culex: Plasmodium spp., Dirofilaria spp., Setaria spp.; rodzaj Cilicoides: Plasmodium agamae; świerszcz polny (Gryllus campestris): Leidyana gryllorum; wszoł psi (Trichodectes canis), pchła psia (Ctenocephalides canis) i kocia (C. felis): Dipylidium caninum
3. żywiciele: skorupiaki: oczliki (Cyclops spp.): Diphyllobothrium latum, Dracunculus medinensis, Ligula intestinalis, Bothriocephalus acheilognathi, Philometra lusiana; raczyniec jadalny (Carcinus maenas): Sacculina carcini; rozwielitki (Daphnia spp.): Echinuria uncinata; kiełże (Gammarus spp.): Streptocara crassicauda
4. żywiciele: pajęczaki: kleszcze Ixodes spp., Dermatocentor spp., Rhipicephalus spp.: Babesia spp., Hepatozoon spp.
5. żywiciele: skąposzczety: dżdżowniczki (Lumbriculus variegatus): Dioctophyme renale; dżdżownica ziemna (Lumbricus terrestris)Monocystis lumbricii, Heterakis gallinarum, Syngamus trachea, Capillaria spp.; rurecznik mułowy (Tubifex tubifex): Caryophyllaeus spp., Khawia sinensis

Ćwiczenia 3: Serologiczna i molekularna diagnostyka inwazji pasożytniczych. Leki o działaniu przeciwpasożytniczym (Dr Dawid Jańczak)
1. metody serologiczne: aglutynacja bezpośrednia, ELISA, IFT, IC, techniki PCR: nested PCR, multiplex PCR, real-time PCR
2. rejestracja leków weterynaryjnych i przepisy dotyczące ich stosowania. Kaskada stosowania leków w weterynarii i zastosowanie pozaulotkowe leków.
3. leki stosowane w zwalczaniu pasożytów wewnętrznych - ich spektrum, mechanizmy działania, metabolizm i działania niepożądane.
4. leki stosowane w zwalczaniu pasożytów zewnętrznych - ich spektrum, mechanizmy działania, metabolizm i działania niepożądane.

Ćwiczenia 4: Choroby pasożytnicze psów i kotów cz. I (Dr Dawid Jańczak)
1. pierwotniaki: giardioza (Giardia intestinalis), kryptosporydioza (Cryptosporidium spp.), cystoisosporoza (Cystoisospora canis, C. ohioensis-complex, C. felis, C. rivolta), sarkocystoza (Sarcocystis spp.), toksoplazmoza (Toxoplasma gondii), neosporoza (Neospora caninum), rzęsistkowica jelitowa (Tritrichomonas foetus) i jamy ustnej (Tritrichomonas tenax), leiszmanioza (Leishmania spp.), babeszjoza (Babesia canis, B. gibsoni, B. vogeli), hepatozoonoza (Hepatozoon canis), ameboza (Entaomoeba histolytica sensu lato / E. histolityca sensu stricto)
2. zajęcia praktyczne - ocena preparatów mikroskopowych świeżych i utrwalonych w celu identyfikacji form dyspersyjnych pierwotniaków jelitowych.

Ćwiczenia 5: Choroby pasożytnicze psów i kotów cz. II (Dr Dawid Jańczak)
1. przywry: alarioza (Alaria alata), opistorchoza (Opistorchis felineus, O. viverrini), paragonimoza (Paragonimus kellicotti, P. westermani), klonorchoza (Clonorchis sinensis)
2. tasiemce: dipylidioza (Dipyllidium caninum), tenioza (Taenia pisiformis, T. hydatigena, T. multiceps, T. taeniaformis, T. ovis, T. serialis), difylobotrioza (Diphyllobothrium latum), spirometroza (Spirometra erinaceieuropaei), mezocesoidoza (Mesocestoides lineatus), bąblowica jedno- i wielojamowa (Echinococcus granulosus, E. multilocularis)
3. zajęcia praktyczne - ocena morfologiczna przywr i tasiemców, badanie makroskopowe i mikroskopowe preparatów świeżych i utrwalonych.

Ćwiczenia 6: Choroby pasożytnicze psów i kotów cz. III (Dr Dawid Jańczak)
1. nicienie: toksokaroza (Toxocara canis, T. cati), toksaskarioza (Toxascaris leonina), tęgoryjczyca (Uncinaria stenocephala, Ancylostoma tubaeformae, A. caninum), węgorczyca (Strongyloides spp.), włosogłówczyca (Trichuris vulpis), aelurostrongyloza (Aelurostrongylus abstrusus) , troglostrongyloza (Troglostrongylus brevior), angiostrongyloza (Angiostrongylus vasorum), dirofilarioza skórna (Dirofilaria repens) i sercowa (Dirofilaria immitis), telazjoza (Thelazia callipaeda), kapilariozy układowe (Capillaria aerophila, C. putorii, C. boehmi, C. plica, Aonchoteca (Capillaria) paraanalis).
2. zajęcia praktyczne - ocena morfologiczna nicieni, badanie makro i -mikroskopowe preparatów świeżych i utrwalonych, badanie krwi metodą wg Knott’a oraz metodą grubej kropli krwi

Ćwiczenia 7: Choroby pasożytnicze koni (Dr Mirosław Krawczyk)
1. pierwotniaki: eimerioza (Eimeria leuckarti), sarkocystoza (Sarcocystis spp.), babeszjoza (Babesia caballi), theilerioza (Theileria equi), klosieloza (Klosiella equi)
2. przywry: fascjoloza (Fasciola hepatica), dikrocelioza (Dicrocoelium dendriticum)
3. tasiemce: anoplocefalidoza (Anoplocephala magna, A. perfoliata)
4. zajęcia praktyczne - badanie kału koni oraz osłów metodą flotacji

Ćwiczenia 8: Choroby pasożytnicze trzody chlewnej (Dr Mirosław Krawczyk)
1. pierwotniaki: izosporoza (Isospora suis), eimerioza (Eimeria debliecki, E. neodebliecki, E. perminuta, E. polita, E. porci, E. scabra, E. spinosa, E. suis, and E. szechuanensis), giardioza (Giardia intestinalis), sarkocystoza (Sarcocystis spp.), balantidioza (Balantidium coli)
2. tasiemce: wągrzyca (Cysticercus cellulosae)
3. nicienie: glistnica (Ascaris suum), włośnica (Trichinella spiralis, T. pseudospiralis, T. britovi, T. murelli, T. nativa, T. papuae, T. nelsoni, T. zimbabwiensis, T. patagoniensis, Trichinella genotypy: T6, T8, T9, metastrongyloza (Metastrongylus spp.), ezofagostomoza (Oesophagostomum dentatum), węgorczyca (Strongyloides spp.), włosogłówczyca (Trichuris suis)
4. zajęcia praktyczne - badanie kału świń metodą flotacji i rozmazów

Ćwiczenia 9: Choroby pasożytnicze przeżuwaczy cz. I (Dr Dawid Jańczak)
1. pierwotniaki: eimerioza (Eimeria alabamensis, E. auburnensis, E. bovis, E. brasiliensis, E. bukidnonensis, E. canadensis, E. cylindrica, E. ellipsoidalis, E. pellita, E. subspherica, E. wyomingensis, E. zuernii), kryptosporydioza (Cryptosporidium spp.), giardioza (Giardia intestinalis), neosporoza (Neospora caninum), toksoplazmoza (Toxoplasma gondii), sarkocystoza (Sarcocystis spp.)
2. przywry: fascioloza (Fasciola hepatica), dikrocelioza (Dicrocoelium dendriticum), paramfistomoza (Paramphistomum spp., Calicophoron spp., Cotylophoron spp., eurytremoza (Eurytrema spp.)
3. tasiemce: moniezioza (Moniezia spp.), wągrzyca (Cysticercus bovis)
4. zajęcia praktyczne - badanie kału bydła, owiec i kóz metodą flotacji i rozmazów

Ćwiczenia 10: Choroby pasożytnicze przeżuwaczy cz. II (Dr Dawid Jańczak)
1. nicienie (trawieńca): Haemonchus spp., Ostertagia ostertagi, Mecistocirrus digitatus, Trichostrongylus spp.
2. nicienie (jelita cienkiego): Cooperia spp., Strongyloides papillosus, Bunostomum phlebotomum, Nematodirus spp., Toxocara vitulorum, Aonchotheca bovis
3. nicienie (jelita grubego): Oesphagostomum spp., Chabertia ovina, Trichuris spp., Skrjabinema spp.,
4. nicienie oczne Thelazia spp.
5. zajęcia praktyczne - badanie kału bydła, owiec i kóz metodą flotacji oraz metodą McMaster’a

Ćwiczenia 11: Choroby pasożytnicze zajęczaków, gryzoni, drobnych ssaków, gadów i ptaków ozdobnych (Dr Mirosław Krawczyk)
1. pierwotniaki: kokcydiozy (Eimeria spp., Isospora spp., Choleoeimeria spp., Atoxoplasma spp.), giardioza (Giardia intestinalis, G. muris, G. psittaci, G. ardeae), kryptosporydioza (Cryptosporidium spp.), encefalitozoonoza (Encephalitozoon cuniculi), blastocystoza (Blastocystis spp.), ameboza (Entamoeba spp.), heksamitoza (Hexamita spp.), rzęsistkowica (Trichomonas spp., Monocercomonas spp.), inwazje orzęsków (Balantidium spp., Nyctotherus spp.), pasożyty krwi: Leucocytozoon spp., Plasmodium spp., Haemoproteus spp.
2. przywry: Brachylaemus erinacei
3. tasiemce: hymenolepidoza (Hymenolepis s. Rodentolepis nana, Hymenolepis diminuta), mesocestoidoza (Mesocestoides spp.), inwazje Raillietina spp., inwazje Capsulotaenia spp.
4. nicienie: glistnica (Ascaris spp., Baylisascaris spp.), włosogłówczyca (Trichuris spp.), kapilariozy układowe (Capillaria spp.), krenosomoza (Crenosoma striatum), syngamoza (Syngamus trachea), trichosomoidoza (Trichosomoides nasalis, T. crassicauda), tęgoryjczyca (Ancylostomatidae), węgorczyca (Strongyloides spp.) owsica (Oxyuridae), dirofilariozy (Dirofilaria spp.), inwazje Enoplida spp., Spirurida spp.
5. ektopasożyty: świerzb i inne roztocza (Sarcoptes spp., Psoroptes cuniculi, Myobia spp., Chirodiscoides caviae, Demodex spp.), wszawica (Polyplax spinulosa), wszołowica (Gliricola porcelli, Trimenopon hispidum, T. jenningsi), cheyletieloza Cheyletiella parasitovorax, krwiopijne roztocza (Dermanyssus spp., Ornithonyssus spp., Ophionyssus spp.)
6. zajęcia praktyczne - badanie kału drobnych ssaków metodą flotacji i rozmazów

Ćwiczenia 12: Owady i pajęczaki jako czynnik etiologiczny ektoparazytoz u zwierząt oraz wektory chorób chorób pasożytniczych, bakteryjnych i wirusowych (Dr Mirosław Krawczyk)
1. wszawica (Linognatus spp., Haematopinus spp., Pediculus spp., Phthirius spp.)
2. wszołowica (Trichodectes spp., Felicola spp., Bovicola spp., Werneckiella spp.)
3. gzawica (Gasterophilus spp.)
4. muszyca (Diptera)
5. świerzb (Otodectes spp., Sarcoptes spp., Notoedres spp., Psoroptes spp.)
6. nużyca (Demodex spp.)
7. cheyletieloza (Cheyletiella spp.)
8. inne roztocza (Myobia spp., Chirodiscoides spp.)
9. krwiopijne roztocza (Dermanyssus spp., Ornithonyssus spp., Ophionyssus spp.)
10. kleszcze (Ixodes spp., Dermacentor spp., Riphicephalus spp., Hyalomma spp.)
11. pchły (Ctenocephalides spp., Pulex spp.)
12. zajęcia praktyczne – preparatów odciskowych, całych okazów roztoczy, kleszczy, pcheł, wszy, wszołów i innych owadów

W cyklu 2025/26L:

WYKŁADY:
1. Wstęp do parazytologii weterynaryjnej (DJ)
2. Pierwotniaki istotne w weterynarii – systematyka, biologia, morfologia (DJ)
3. Choroby pasożytnicze koni I (ZS)
4. Choroby pasożytnicze przeżuwaczy I (ZS)
5. Choroby pasożytnicze przeżuwaczy II (ZS)
6. Choroby pasożytnicze trzody chlewnej I (ZS)
7. Choroby pasożytnicze trzody chlewnej II (ZS)
8. Przywry digeniczne oraz tasiemce istotne w weterynarii -
systematyka, biologia, morfologia (DJ)
9. Nicienie istotne w weterynarii - systematyka, biologia, morfologia (DJ)
10. Stawonogi istotne w weterynarii - systematyka, biologia, morfologia (DJ)
11. Zoonozy pasożytnicze (DJ)
12. Choroby pasożytnicze ssaków mięsożernych I (DJ)
13. Choroby pasożytnicze ssaków mięsożernych II (DJ)
14. Choroby pasożytnicze dzikich zwierząt (AP)
15. Lekooporność wśród pasożytów (AP)
AP - dr hab. Anna Pyziel, prof. UMK
ZS - prof. dr hab. Zenon Sołtysiak
DJ - dr Dawid Jańczak

ĆWICZENIA LABORATORYJNE
Ćwiczenia 1: Diagnostyka mikroskopowa w parazytologii (KH)
Ćwiczenia 2: Serologiczna i molekularna diagnostyka inwazji
pasożytniczych. Leki o działaniu przeciwpasożytniczym (DJ)
Ćwiczenia 3: Choroby pasożytnicze psów i kotów cz. I (KH)
Ćwiczenia 4: Choroby pasożytnicze psów i kotów cz. II (KH)
Ćwiczenia 5: Choroby pasożytnicze psów i kotów cz. III (KH)
Ćwiczenia 6: Choroby pasożytnicze koni (MK)
Ćwiczenia 7: Choroby pasożytnicze trzody chlewnej (MK)
Ćwiczenia 8: Choroby pasożytnicze przeżuwaczy cz. I (KH)
Ćwiczenia 9: Choroby pasożytnicze przeżuwaczy cz. II (KH)
Ćwiczenia 10: Choroby pasożytnicze zajęczaków, gryzoni, drobnych
ssaków i gadów (MK)
Ćwiczenia 11: Owady i pajęczaki jako czynnik etiologiczny
ektoparazytoz u zwierząt oraz wektory chorób pasożytniczych,
bakteryjnych i wirusowych (KH)
Ćwiczenia 12: Zajęcia praktyczne - zagadki kliniczne: rozpoznanie
mikroskopowe, obraz kliniczny i dobór leczenia (MK)
MK - dr Mirosław Krawczyk
KH - lek. wet. Katarzyna Hylińska
DJ - dr Dawid Jańczak

Całkowity nakład pracy studenta

Godziny realizowane z udziałem nauczycieli 90 godz. (3,6 ECTS) : - wykłady 30 godz. - ćwiczenia laboratoryjne 60 godz. Czas poświęcony na pracę indywidualną studenta 60 godz. (2,4 ECTS): przygotowanie do zaliczeń cząstkowych 30 godz. przygotowanie do egzaminu końcowego 30 godz. Łącznie: 150 godz. (6 ECTS), w tym: liczba punktów ECTS, które student uzyskuje realizując zajęcia kształtujące umiejętności praktyczne: 4,8 ECTS (125 godz.)

Efekty uczenia się - wiedza

W1: opisuje biologię, morfologię oraz ekologię różnych grup pasożytów (pierwotniaki, płazińce, obleńce, stawonogi) wywołujących inwazje u psów, kotów, lisów, ptaków, bydła, owiec, kóz, trzody chlewnej, koni i drobnych gryzoni oraz gadów - K_W13 W2: opisuje cykle rozwojowe różnych grup pasożytów oraz charakteryzuje drogi zarażenia – K_W13, K_W33 W3: wymienia i charakteryzuje choroby pasożytnicze o potencjale zoonotycznym, ze szczególnym uwzględnieniem zarażeń drogą pokarmową z produktów pochodzenia zwierzęcego – K_W13, K_W33 W4: charakteryzuje grupy leków stosowanych w zwalczaniu inwazji pasożytów jelitowych, tkankowych i pasożytów zewnętrznych u psów, kotów, lisów, ptaków, bydła, owiec, kóz, trzody chlewnej i koni – K_W17 W5: wymienia gatunki pasożytów mogące wywoływać choroby o przebiegu bezobjawowym, ostrym i nadostrym oraz metody ich wykrywania - K_W33

Efekty uczenia się - umiejętności

U1: wykorzystuje rozmazy, techniki flotacyjne, dekantację i sedymentację oraz immunochromatografię w diagnostyce zarażeń pasożytniczych - K_U02, K_U29 U2: przygotowuje i wykonuje badania mikroskopowe z preparatów świeżych jak i barwionych celem wykrycia form pasożytniczych w różnych materiałach biologicznych - K_U02, K_U29 U3: dobiera techniki serologiczne w diagnostyce zarażeń bezobjawowych oraz potrafi wykorzystać techniki biologii molekularnej i interpretację uzyskanego wyniku wobec przebiegu zarażenia u różnych grup zwierząt - K_U02, K_U29 U4: pobiera oraz poprawnie przechowuje lub konserwuje materiał do dalszych badań z uwzględnieniem dalszej diagnostyki - K_U29 U5: przygotowuje samodzielnie skierowanie w kierunku badań parazytologicznych uwzględniając materiał jaki został pobrany od pacjenta oraz wykonuje badanie i sporządza raport z badania parazytologicznego – K_U14 U6: rozpoznaje zmiany patologiczne w następstwie inwazji pasożytniczej, prawidłowo je opisuje oraz zleca odpowiednią terapię – K_U14 U7: interpretuje wyniki badania parazytologicznego w sposób kompleksowy rozumiejąc ich miejsce w całym procesie diagnostycznym oraz w sposób zrozumiały konsultuje przypadki kliniczne z innym lekarzem weterynarii lub właścicielem zwierzęcia – K_U14 U8: przedstawia w sposób zrozumiały potrzebę profilaktyki przeciwpasożytniczej u różnych grup zwierząt z uwagi na ryzyko zoonoz pasożytniczych i straty ekonomiczne – K_U19, K_U44, U9: dobiera preparaty stosowane w celu zwalczania lub zapobiegania zarażeniom pasożytniczym uwzględniając ich mechanizm i czas działania, dzięki czemu jest w stanie zapobiegać lekooporności - K_U32, K_U33, K_U36

Efekty uczenia się - kompetencje społeczne

K1: rozumie zagrożenie dla środowiska, zdrowia i życia ludzi oraz zwierząt wynikające z nieprzestrzegania zasad profilaktyki przeciwpasożytniczej - K_K01, K_K02 K2: rozumie zagrożenie dla środowiska, zdrowia i życia ludzi oraz zwierząt wynikające z nieprawidłowego stosowania akarycydów i insektycydów - K_K01, K_K02 K3: ma świadomość odpowiedzialności za narastanie lekooporności wśród pasożytów chorobotwórczych dla zwierząt i ludzi – K_K01, K_K02, K_K05, K_K11 K4: systematycznie pogłębia wiedzę i umiejętności, wykorzystując źródła naukowe i obiektywne źródła informacji – K_K01, K_K02, K_K04, K_K07, K_K08

Koordynatorzy przedmiotu

Dawid Jańczak

Metody dydaktyczne

Wykłady: Metody dydaktyczne podające: wykład informacyjny (konwencjonalny) Zajęcia laboratoryjne: Metody dydaktyczne eksponujące: pokaz Metody dydaktyczne podające: wykład informacyjny (wprowadzenie do zajęć laboratoryjnych) Metody dydaktyczne poszukujące: ćwiczeniowa, laboratoryjna

Rodzaj przedmiotu

przedmiot obligatoryjny

Wymagania wstępne

Student posiada zaliczenie z przedmiotów: Biologia, Chemia, Biologia komórki, Anatomia zwierząt cz. I i II, Histologia i embriologia cz. I i II, Mikrobiologia cz. I i II, Biochemia cz. I i II, Fizjologia zwierząt cz. I i II, Farmakologia weterynaryjna cz. I, Patofizjologia cz. I, Immunologia i i Diagnostyka kliniczna i laboratoryjna. Przedmiot prowadzony na VI semestrze (III rok).

Kryteria oceniania

Wykład:
Egzamin pisemny obejmujący pytania testowe oraz krótkie pytania opisowe. Egzamin weryfikuje efekty uczenia się w zakresie wiedzy (W1–W5) oraz kompetencji społecznych (K1–K4).

Kryteria oceniania:
ocena dostateczna: 60–70%
ocena dostateczna plus: 71–79%
ocena dobra: 80–87%
ocena dobra plus: 88–94%
ocena bardzo dobra: 95–100%

Zajęcia laboratoryjne:
Zaliczenie na ocenę na podstawie kolokwiów cząstkowych, bieżącej oceny pracy studenta oraz oceny umiejętności praktycznych. Kolokwia mają formę pisemną, ustną lub testową. Szczegółowy zakres materiału i forma kolokwium są podawane studentom na początku zajęć. Zaliczenie laboratoriów wymaga uzyskania pozytywnych ocen z kolokwiów oraz wykonania zadań praktycznych przewidzianych programem zajęć.
Ocena umiejętności praktycznych obejmuje: przygotowanie materiału do badania, dobór metody diagnostycznej, wykonanie preparatu, posługiwanie się sprzętem laboratoryjnym, rozpoznawanie form rozwojowych pasożytów, interpretację wyniku oraz sporządzenie krótkiego opisu lub raportu z badania. Kompetencje społeczne są weryfikowane poprzez obserwację pracy studenta podczas zajęć.

Kryteria oceniania:
ocena dostateczna: 60–70%
ocena dostateczna plus: 71–79%
ocena dobra: 80–87%
ocena dobra plus: 88–94%
ocena bardzo dobra: 95–100%

Ocena końcowa z zajęć laboratoryjnych jest ustalana na podstawie ocen z kolokwiów cząstkowych oraz oceny umiejętności praktycznych uzyskanej w toku zajęć. Kryteria zaliczenia poprawkowego są identyczne jak dla terminu pierwszego.

Praktyki zawodowe

Literatura

Literatura obowiązkowa:
1. Gundłach J.L., Sadzikowski B., 2004r., "Parazytologia i parazytozy zwierząt", wyd. PWRiL.
2. Gundłach J.L., Sadzikowski B, 2005r. "Diagnostyka i zwalczanie inwazji pasożytów u zwierząt", wyd. Wyd. UP w Lublinie.
3. Bowman D.D., 2012r., „Parazytologia weterynaryjna. Georgis”, wyd. EDRA.
4. Barr S.C., Bowman D.D., 2011r., “Blackwell's Five-Minute Veterinary Consult Clinical Companion: Canine and Feline Infectious Diseases and Parasitology, 2nd Edition”, wyd. John Wiley and Sons. (fragmenty)
5. Zajac A.M., Conboy G.A., Little S.E., Reichard M.V., 2021r., “Veterinary Clinical Parasitology, 9th Edition”, wyd. Wiley-Blackwell. (fragmenty)
Literatura uzupełniająca:
1. Kocięcka W., 2016r., „Parazytologia kliniczna. Repetytorium z zakresu wybranych chorób pasożytniczych i tropikalnych”, wyd. UM Poznań.
2. Pawłowski Z.S., Stefaniak J., „Parazytologia kliniczna w ujęciu wielodyscyplinarnym”, wyd. PZWL.
3. Baker D.G., 2007r., “Flynn’s Parasites of Laboratory Animals 2nd Edition”, wyd. Blackwell Publ.

Więcej informacji

Dodatkowe informacje (np. o kalendarzu rejestracji, prowadzących zajęcia, lokalizacji i terminach zajęć) mogą być dostępne w serwisie USOSweb:

Strona przedmiotu 7100-PARAZ-3-SJ w USOSweb