Technologia otrzymywania białek rekombinowanych 2600-TOBBIOT-1-S2
Przedmiot realizowany jest w formie wykładów i ćwiczeń laboratoryjnych
Na wykładach zostaną omówione następujące tematy:
1. Wprowadzenie do podstawowych problemów i technik inżynierii genetycznej
2. Projektowania oraz wytwarzania białek o zmodyfikowanej strukturze i/lub funkcji
3. Wykorzystanie prokariotycznych oraz eukariotycznych systemów ekspresyjnych do syntezy białek
4. Czynniki wpływające na wydajność transkrypcji i translacji,
5. Najczęściej spotykane problemy i ich możliwe rozwiązania w eksperymentach nadekspresji białek w komórkach E.coli; procesy fałdowania i agregacji białek w komórce,
6. Systemy wydzielania białek,
7. Metody wprowadzania mutacji i tworzenia białek fuzyjnych,
8. Zwiększanie skali podczas tworzenia nadprodukcji białek
9. Przykłady wykorzystania białek fuzyjnych w medycynie i przemyśle
Ćwiczenia będą obejmować nastepujące zagadnienia:
Zajęcia organizacyjne. Zapoznanie z zasadami bhp w laboratorium badawczym. Omówienie warunków zaliczenia kursu. Zapoznanie z aparaturą wykorzystywaną w trakcie ćwiczeń.
Klonowanie genów do wektorów ekspresyjnych. Transformacja bakterii Escherichia coli i hodowla w celu uzyskania w nadprodukcji białek rekombinowanych.
Metody tworzenia białek fuzyjnych. Rodzaje nakładek. Oczyszczanie oraz detekcja białek rekombinowanych.
Czynniki wpływające na wydajność translacji, procesy fałdowania i agregacji białek w komórce.
Praca doświadczalna:
Przygotowanie plazmidu pGEX-6P-2 do klonowania – trawienie wektora enzymem restrykcyjnym XhoI, elektroforeza preparatywna zlinearyzowanego i defosforylowanego końcuów plazmidu
Przygotowanie insertu PnCDPK do klonowania – Trawienie enzymem XhoI plazmidu pTZ57R/T niosącego wstawkę ORF genu PnCDPK1, analiza elektroforetyczna, oczyszczanie otrzymanej wstawki, spektrofotometryczne określenie ilości
Ligacja wektora pGEX-6P-2/XhoI z fragmentem PnCDPK/XhoI, transformacja komórek kompetentnych E. coli linii BL21 wektorem pGEX-PnCDPK1
Ekspresja rekombinowanego plazmidu pGEX-PnCDPK1 w komórkach BL21 w celu otrzymywania białka rekombinowanego i uzyskania jego naprodukcji.
Oczyszczanie białka fuzyjnego i rekombinowanego przy użyciu wybranych technik chromatograficznych.
Analiza białkowych produktów ekspresji z wektora z użyciem SDS-PAGE i Western-blott z użyciem specyficznych poloklonalnych przeciwciał
Całkowity nakład pracy studenta
Efekty uczenia się - wiedza
Efekty uczenia się - umiejętności
Efekty uczenia się - kompetencje społeczne
Metody dydaktyczne
Metody dydaktyczne podające
Metody dydaktyczne poszukujące
- ćwiczeniowa
- laboratoryjna
Rodzaj przedmiotu
Wymagania wstępne
Koordynatorzy przedmiotu
Kryteria oceniania
Metody oceniania
Wykłady podlegający kontroli- zaliczenie pisemne – K_W04, K_W52, K_W07, K_W08, K_W15, K_W21, K_U02, K_U03, K_U05, K_U06, K_U07, K_U15, K_K08, K_K10, K_K11, K_K12.
Ćwiczenia - raport końcowy – K_W04, K_W52, K_W07, K_W08, K_W15, K_W21, K_U02, K_U03, K_U05, K_U06, K_U07, K_U15,
Aktywność (tylko kompetencje) – K_K08, K_K10, K_K11, K_K12
Praktyki zawodowe
nie dotyczy
Literatura
Literatura podstawowa:
Ratledge C., Kristiansen B., 2011. Podstawy biotechnologii. Wydawnictwo Naukowe PWN.
Turner P.C., McLennan A.G., Bates A.D., White M.R.H., 2007. Krótkie wykłady. Biologia molekularna. Wydanie drugie. Wydawnictwo Naukowe PWN.
Staroń A., Grabowska A., Jagusztyn-Krynicka E. K., 2008. Nadprodukcja i oczyszczanie rekombinowanych, heterologicznych białek w komórkach Escherichia coli. Postępy Mikrobiologii 47 (2): 83-95.
Nuc P., Nuc K., 2006. Produkcja rekombinowanych białek w Escherichia coli. Postępy Biochemii 52 (4) 448-456.
Gerd Gellissen (Ed.), 2005 Production of Recombinat Proteins, WILEY-VCh Verlag GmbH & Co. KGaA
Literatura uzupełniająca:
http://www.molecularfarming.com/
http://www.e-biotechnologia.pl/Artykuly/Bialka-rekombinowane/
Więcej informacji
Dodatkowe informacje (np. o kalendarzu rejestracji, prowadzących zajęcia, lokalizacji i terminach zajęć) mogą być dostępne w serwisie USOSweb: