Biologia molekularna
1700-A4-BIOLMOL-SJ
Wykłady z przedmiotu Biologia molekularna maja na celu jest zapoznanie studentów z podstawową wiedzą na temat biologii molekularnej w kontekście zastosowania we współczesnej diagnostyce medycznej. Program wykładów obejmuje zagadnienia dotyczące budowy komórki oraz budowy i funkcji genomu, transkryptomu i proteomu człowieka. Obejmuje również metody izolacji DNA i określania jego stężenia oraz metody analizy DNA takie jak PCR, metody hybrydyzacyjne, sekwencjonowanie DNA. Ponadto studenci zdobywają wiedzę na temat wektorów i enzymów wykorzystywanych jako narzędzia biologii molekularnej i inżynierii genetycznej. Poznają również możliwości zastosowania biologii molekularnej w diagnostyce chorób genetycznych i infekcyjnych. Poznają strategie i perspektywy analizy genomów oraz internetowe bazy danych.
Laboratoria są częściowo powiązane z zagadnieniami omawianymi na wykładach. Mają na celu zapoznanie studentów z metodami pobierania materiału do badań genetycznych, izolacji i oceny stężenia DNA, a także analizy sekwencji. W trakcie zajęć studenci poznają również metody diagnostyki molekularnej chorób infekcyjnych na przykładzie Helicobacter pylori oraz wykrywania genetycznej oporności na wirusa HIV. Studenci w trakcie ćwiczeń zdobywają praktyczną wiedzę na temat pobierania próbek do badań i izolacji DNA, a także metod analizy DNA. Laboratoria pozwalają na wypracowanie umiejętności pracy indywidualnej i zespołowej oraz nabycie umiejętności praktycznych potrzebnych do wykonywania zawodu diagnosty laboratoryjnego. Ponadto, mają na celu wypracowanie nawyku samokształcenia.
|
W cyklu 2023/24Z:
Wykłady z przedmiotu Biologia molekularna mają na celu
jest zapoznanie studentów z podstawową wiedzą na temat biologii molekularnej w kontekście zastosowania we współczesnej diagnostyce medycznej. Program wykładów obejmuje zagadnienia dotyczące budowy komórki oraz budowy i funkcji genomu, transkryptomu i proteomu człowieka oraz procesy replikacji, naprawy i rekombinacji kwasu deoksyrybonukleinowego (DNA), transkrypcji i translacji oraz degradacji DNA, kwasu rybonukleinowego (RNA) i białek. Metody izolacji DNA i określania jego stężenia oraz metody analizy DNA takie jak PCR, metody hybrydyzacyjne, sekwencjonowanie DNA. Ponadto studenci zdobywają wiedzę
na temat wektorów i enzymów wykorzystywanych jako narzędzia biologii molekularnej. Poznają również możliwości zastosowania biologii molekularnej w diagnostyce chorób genetycznych
i infekcyjnych. Poznają strategie i perspektywy analizy genomów oraz internetowe bazy danych.
Laboratoria są częściowo powiązane z zagadnieniami omawianymi na wykładach. Mają na celu zapoznanie studentów
z metodami pobierania materiału do badań genetycznych, izolacji i oceny stężenia DNA, a także analizy sekwencji. W trakcie zajęć studenci poznają również metody diagnostyki molekularnej chorób infekcyjnych na przykładzie Helicobacter pylori
oraz wykrywania genetycznej oporności na wirusa HIV. Studenci w trakcie ćwiczeń zdobywają praktyczną wiedzę na temat pobierania próbek do badań i izolacji DNA, a także metod analizy DNA. Laboratoria pozwalają na wypracowanie umiejętności pracy indywidualnej i zespołowej oraz nabycie umiejętności praktycznych potrzebnych do wykonywania zawodu diagnosty laboratoryjnego. Ponadto, mają na celu wypracowanie nawyku samokształcenia.
|
W cyklu 2024/25Z:
Wykłady z przedmiotu Biologia molekularna mają na celu
jest zapoznanie studentów z podstawową wiedzą na temat biologii molekularnej w kontekście zastosowania we współczesnej diagnostyce medycznej. Program wykładów obejmuje zagadnienia dotyczące budowy komórki oraz budowy i funkcji genomu, transkryptomu i proteomu człowieka oraz procesy replikacji, naprawy i rekombinacji kwasu deoksyrybonukleinowego (DNA), transkrypcji i translacji oraz degradacji DNA, kwasu rybonukleinowego (RNA) i białek. Metody izolacji DNA i określania jego stężenia oraz metody analizy DNA takie jak PCR, metody hybrydyzacyjne, sekwencjonowanie DNA. Ponadto studenci zdobywają wiedzę
na temat wektorów i enzymów wykorzystywanych jako narzędzia biologii molekularnej. Poznają również możliwości zastosowania biologii molekularnej w diagnostyce chorób genetycznych
i infekcyjnych. Poznają strategie i perspektywy analizy genomów oraz internetowe bazy danych.
Laboratoria są częściowo powiązane z zagadnieniami omawianymi na wykładach. Mają na celu zapoznanie studentów
z metodami pobierania materiału do badań genetycznych, izolacji i oceny stężenia DNA, a także analizy sekwencji. W trakcie zajęć studenci poznają również metody diagnostyki molekularnej chorób infekcyjnych na przykładzie Helicobacter pylori
oraz wykrywania genetycznej oporności na wirusa HIV. Studenci w trakcie ćwiczeń zdobywają praktyczną wiedzę na temat pobierania próbek do badań i izolacji DNA, a także metod analizy DNA. Laboratoria pozwalają na wypracowanie umiejętności pracy indywidualnej i zespołowej oraz nabycie umiejętności praktycznych potrzebnych do wykonywania zawodu diagnosty laboratoryjnego. Ponadto, mają na celu wypracowanie nawyku samokształcenia.
|
Całkowity nakład pracy studenta
1. Nakład pracy związany z zajęciami wymagającymi bezpośredniego
udziału nauczycieli akademickich wynosi:
1. udział w wykładach: 18 godzin
2. udział w laboratoriach: 27 godzin
Nakład pracy związany z zajęciami wymagającymi bezpośredniego udziału nauczycieli akademickich wynosi
45 godzin, co odpowiada 1,8 punktu ECTS.
2. Bilans nakładu pracy studenta:
udział w wykładach: 18 godzin
udział w laboratoriach: 27 godzin
czytanie wskazanej literatury naukowej: 5 godziny
przygotowanie do laboratoriów: 10 godzin
przygotowanie do kolokwiów: 3 godziny
przygotowanie do egzaminu i egzamin: 10 + 2 = 12 godzin.
Łączny nakład pracy studenta związany z realizacją przedmiotu wynosi 75 godzin, co odpowiada 3 punktom ECTS.
3. Bilans nakładu pracy studenta o charakterze praktycznym:
udział w laboratoriach: 27 godzin
przygotowanie do laboratoriów (w zakresie praktycznym): 10 godzin,
przygotowanie do kolokwium w zakresie praktycznym:
3 godziny,
przygotowanie do egzaminu: 10 godzin.
Łączny nakład pracy studenta o charakterze praktycznym wynosi 50 godziny, co odpowiada 2,0 punktu ECTS.
4. Czas wymagany do odbycia obowiązkowej praktyki
Nie dotyczy.
Efekty uczenia się - wiedza
Student zna i rozumie:
W1: budowę i funkcje genomu, transkryptomu i proteomu człowieka oraz procesy replikacji, transkrypcji i translacji DNA, a także mechanizmy naprawy i rekombinacji kwasu deoksyrybonukleinowego (DNA). E.W06.
W2: mechanizmy regulacji ekspresji genów oraz problematykę rekombinacji i klonowania DNA. E.W07.
W3: zasady i zastosowania technik biologii molekularnej. E.W08.
Efekty uczenia się - umiejętności
Student potrafi:
U1: posługiwać się technikami biologii molekularnej, a także zinterpretować uzyskane wyniki. E.U12.
U2: interpretować wyniki badań genetycznych oraz zapisać je, używając obowiązującej międzynarodowej nomenklatury. E.U16.
Efekty uczenia się - kompetencje społeczne
Student gotów jest do:
K1: potrafi wykazywać się kreatywnością w działaniu związanym z realizacją zadań diagnosty laboratoryjnego. E.K01.
K2: rozumie ważność działań zespołowych i potrafi brać odpowiedzialność za wyniki wspólnych działań. E.K02.
K3: potrafi formułować opinie dotyczące różnych aspektów działalności zawodowej.E.K02.
Koordynatorzy przedmiotu
Metody dydaktyczne
Wykład:
wykład z prezentacją multimedialną
Laboratoria:
metoda obserwacji
ćwiczenia praktyczne
analiza wyników badań genetycznych
metoda klasyczna problemowa
dyskusja
Rodzaj przedmiotu
przedmiot obligatoryjny
Wymagania wstępne
Do realizacji opisywanego przedmiotu niezbędne jest posiadanie podstawowych wiadomości z zakresu biologii i genetyki. Student powinien posiadać wiedzę i umiejętności zdobyte w ramach przedmiotów: biologia i genetyka oraz biochemia.
Kryteria oceniania
Podstawą do zaliczenia przedmiotu Biologia molekularna jest przestrzeganie zasad ujętych w Regulaminie Dydaktycznym Katedry Medycyny Sądowej.
Warunkiem zaliczenia przedmiotu jest zaliczenie laboratorium oraz zdanie egzaminu.
Laboratoria:
1. Student powinien być przygotowany na każde zajęcia laboratoryjne. Warunkiem zaliczenia laboratorium jest uzyskanie pozytywnej oceny z wszystkich kolokwiów.
2. Kolokwium ma formę pisemną, a warunkiem jego zaliczenia jest minimum 60% poprawnych odpowiedzi.
3. Student ma prawo do jednego kolokwium poprawkowego.
Egzamin z przedmiotu
1. Warunkiem przystąpienia do egzaminu jest zaliczenie laboratorium.
2. Egzamin składa się z 40 pytań: testowych (odpowiedź jednokrotnego wyboru) dotyczących wiedzy zdobytej podczas wykładów oraz laboratoriów. Za każdą prawidłową odpowiedź student uzyskuje jeden punkt. Do uzyskania pozytywnej oceny konieczne jest zdobycie 24 (60%) punktów.
3. Uzyskane punkty przelicza się na stopnie według następującej skali:
Procent punktów Ocena
92-100% Bardzo dobry
84-91% Dobry plus
76-83% Dobry
68-75% Dostateczny plus
60-67% Dostateczny
0-59% Niedostateczny
Egzamin końcowy: ≥ 60% (W1, W2, W3, U1, U2)
Kolokwia: ≥ 60% (W1-W3, U1, U2)
Raporty/karty pracy: ≥ 60% (W3, U1, U2, K1, K2, K3)
Praktyki zawodowe
Literatura
Literatura podstawowa:
1. Bal J. (red.), 2023. Genetyka medyczna i molekularna, Wydawnictwo Naukowe PWN, Warszawa
2. Berg L., Stryer L., Tymoczko J., Gatto G.J. 2019. Biochemia, PWN, Warszawa
3. Brown T.A., Genomes 4, 2018. Garland Science, New York (wyd. polskie Genomes 3, 2012, PWN, Warszawa)
4. Słomski R. Analiza DNA. Teoria i praktyka. Wydawnictwo Uniwersytetu Przyrodniczego w Poznaniu, Poznań 2011.
Literatura uzupełniająca:
1. Alberts, B., Bray, D., Hopkin K. i wsp., 2024. Podstawy biologii komórki, PWN, Warszawa.
|
W cyklu 2023/24Z:
Literatura podstawowa:
1. Bal J. Biologia molekularna w medycynie. PWN, Warszawa 2008
2. Brown TA. Genomes 3. BIOS Scientific Publisher, Oxford, UK 2006
3. Brown TA. Gene Cloning and DNA Analysis:
An Introduction. Wiley-Blackwell, Malden 2010
4. Słomski R. Analiza DNA. Teoria i praktyka. Wydawnictwo Uniwersytetu Przyrodniczego w Poznaniu, Poznań 2008
5. Leokadia Kłyszejko-Stefanowicz, Ćwiczenia z biochemii, PWN, 1999
Literatura uzupełniająca:
1. Alberts B. Molecular biology of the cell. 5th ed. Garland Publishing, New York 2008
2. Korf BR. Genetyka człowieka: rozwiązywanie problemów medycznych. PWN, Warszawa 2003
3. Węgleński P. Genetyka molekularna. PWN, Warszawa 2008
4. Sambrook J, Russell DW. Molecular cloning: a laboratory manual. Cold Spring Harbor Laboratory 4rd ed. New York 2012
|
W cyklu 2024/25Z:
Literatura podstawowa:
1. Bal J. (red.), 2023. Genetyka medyczna i molekularna, Wydawnictwo Naukowe PWN, Warszawa
2. Berg L., Stryer L., Tymoczko J., Gatto G.J. 2019. Biochemia, PWN, Warszawa
3. Brown T.A., Genomes 4, 2017. Garland Science, New York (wyd. polskie Genomes 3, 2012, PWN, Warszawa)
4. Krebs, J.E., Goldstein E.S., Kilpatrick S.T., (ed.) 2017. Lewin’s Genes XII, Jones and Barlett Learning (ew. wcześniejsze wydania)
5. Brown TA. Gene Cloning and DNA Analysis:
An Introduction. Wiley-Blackwell, Malden 2010
6. Słomski R. Analiza DNA. Teoria i praktyka. Wydawnictwo Uniwersytetu Przyrodniczego w Poznaniu, Poznań 2008.
Literatura uzupełniająca:
1. Alberts B. Molecular biology of the cell. 5th ed. Garland Publishing, New York 2008
2. Alberts, B., Bray, D., Hopkin K. i wsp., 2009. Podstawy biologii komórki, PWN, Warszawa.
3. Sambrook J, Russell DW. Molecular cloning: a laboratory manual. Cold Spring Harbor Laboratory 4rd ed. New York 2012
|
W cyklu 2025/26Z:
Literatura podstawowa:
1. Bal J. (red.), 2023. Genetyka medyczna i molekularna, Wydawnictwo Naukowe PWN, Warszawa
2. Berg L., Stryer L., Tymoczko J., Gatto G.J. 2019. Biochemia, PWN, Warszawa
3. Brown T.A., Genomes 4, 2018. Garland Science, New York (wyd. polskie Genomes 3, 2012, PWN, Warszawa)
4. Słomski R. Analiza DNA. Teoria i praktyka. Wydawnictwo Uniwersytetu Przyrodniczego w Poznaniu, Poznań 2011.
Literatura uzupełniająca:
1. Alberts, B., Bray, D., Hopkin K. i wsp., 2024. Podstawy biologii komórki, PWN, Warszawa.
|
Więcej informacji
Dodatkowe informacje (np. o kalendarzu rejestracji, prowadzących zajęcia, lokalizacji i
terminach zajęć) mogą być dostępne w serwisie USOSweb: